BOUGAINVILLEA GLABRA INCREMENTÓ EL
EFECTO ANTIMICROBIANO DE
GENTAMICINA PARA ESCHERICHIA COLI
“IN VITRO”
BOUGAINVILLEA GLABRA INCREASED THE ANTIMICROBIAL
EFFECT OF GENTAMICIN AGAINST ESCHERICHIA COLI “IN VITRO”
Daniela López Hernández
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
Georgina Almaguer Vargas
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
José Ramón Montejano Rodríguez
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
Ana Hilda Figueroa Gutiérrez
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
Marco Antonio Becerril Flores
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
pág. 1218
DOI: https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v10i1.22270
Bougainvillea glabra incrementó el efecto antimicrobiano de gentamicina
para Escherichia coli “in vitro”
Daniela López Hernández1
lo428594@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0009-0004-8257-344X
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
México
Georgina Almaguer Vargas
georgina_almaguer5910@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0000-0002-0396-752X
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
México
José Ramón Montejano Rodríguez
jose_montejano5902@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0000-0002-5744-381X
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
México
Ana Hilda Figueroa Gutiérrez
ana_figueroa3494@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0000-0002-8424-9481
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo.
Pachuca, México
Marco Antonio Becerril Flores
becerril@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0000-0002-2322-4686
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
México
RESUMEN
La resistencia antimicrobiana representa uno de los principales desafíos de la salud mundial ya que
limita la eficacia de los antibióticos y amenaza con una era posantibiótica. Como alternativas, los
extractos de plantas medicinales constituyen expectativas prometedoras para potenciar la acción de
fármacos convencionales. En el presente estudio se empleó el extracto hidroalcohólico de Bougainvillea
glabra para determinar la actividad antimicrobiana de gentamicina frente a Escherichia coli ATCC
25922 in vitro. El extracto se realizó con brácteas y flores de la planta mediante maceración en etanol al
70% y se empleó la técnica de difusión en disco en agar Mueller-Hinton. Los resultados demostraron
que el extracto presentó actividad antimicrobiana propia y que, en combinación con aminoglucósidos,
incrementó significativamente los halos de inhibición, particularmente, gentamicina pasó de 9.04 mm a
17.98 mm y amikacina de 15.82 mm a 19.78 mm, evidenciando un incremento del efecto
antimicrobiano. Además, la resistencia global de la cepa disminuyó de 33.3% a 25% en presencia del
extracto. Estos hallazgos sugieren que Bougainvillea glabra podría utilizarse como coadyuvante en el
tratamiento de infecciones resistentes, aunque son necesarios estudios posteriores para identificar los
metabolitos responsables y validar su eficacia en modelos clínicos.
Palabras clave: Bougainvillea glabra, resistencia antimicrobiana, amikacina, gentamicina, Escherichia
coli.
1 Autor principal
Correspondencia: lo428594@uaeh.edu.mx
DOI: https://doi.org/10.37811/cl_rcm.v10i1.22270
Bougainvillea glabra incrementó el efecto antimicrobiano de gentamicina
para Escherichia coli “in vitro”
Daniela López Hernández1
lo428594@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0009-0004-8257-344X
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
México
Georgina Almaguer Vargas
georgina_almaguer5910@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0000-0002-0396-752X
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
México
José Ramón Montejano Rodríguez
jose_montejano5902@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0000-0002-5744-381X
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
México
Ana Hilda Figueroa Gutiérrez
ana_figueroa3494@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0000-0002-8424-9481
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo.
Pachuca, México
Marco Antonio Becerril Flores
becerril@uaeh.edu.mx
https://orcid.org/0000-0002-2322-4686
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo
México
RESUMEN
La resistencia antimicrobiana representa uno de los principales desafíos de la salud mundial ya que
limita la eficacia de los antibióticos y amenaza con una era posantibiótica. Como alternativas, los
extractos de plantas medicinales constituyen expectativas prometedoras para potenciar la acción de
fármacos convencionales. En el presente estudio se empleó el extracto hidroalcohólico de Bougainvillea
glabra para determinar la actividad antimicrobiana de gentamicina frente a Escherichia coli ATCC
25922 in vitro. El extracto se realizó con brácteas y flores de la planta mediante maceración en etanol al
70% y se empleó la técnica de difusión en disco en agar Mueller-Hinton. Los resultados demostraron
que el extracto presentó actividad antimicrobiana propia y que, en combinación con aminoglucósidos,
incrementó significativamente los halos de inhibición, particularmente, gentamicina pasó de 9.04 mm a
17.98 mm y amikacina de 15.82 mm a 19.78 mm, evidenciando un incremento del efecto
antimicrobiano. Además, la resistencia global de la cepa disminuyó de 33.3% a 25% en presencia del
extracto. Estos hallazgos sugieren que Bougainvillea glabra podría utilizarse como coadyuvante en el
tratamiento de infecciones resistentes, aunque son necesarios estudios posteriores para identificar los
metabolitos responsables y validar su eficacia en modelos clínicos.
Palabras clave: Bougainvillea glabra, resistencia antimicrobiana, amikacina, gentamicina, Escherichia
coli.
1 Autor principal
Correspondencia: lo428594@uaeh.edu.mx
pág. 1219
Bougainvillea glabra increased the antimicrobial effect of gentamicin
against Escherichia coli “in vitro”
ABSTRACT
Antimicrobial resistance represents one of the main challenges to global health, as it limits the
effectiveness of antibiotics and threatens a post-antibiotic era. As alternatives, medicinal plant extracts
offer promising prospects for enhancing the action of conventional drugs. In this study, the effect of the
hydroalcoholic extract of Bougainvillea glabra was evaluated to determine the antimicrobial activity of
amikacin and gentamicin against Escherichia coli ATCC 25922 in vitro. The extract was made from the
plant's bracts by maceration in 70% ethanol and analyzed using the disk diffusion technique on Mueller-
Hinton agar. The results showed that the extract had its own antimicrobial activity and that, in
combination with aminoglycosides, it significantly increased the inhibition halos, particularly
gentamicin, which went from 9.04 mm to 17.98 mm, and amikacin, which went from 15.82 mm to 19.78
mm, evidence of an increase in the antimicrobial effect. In addition, the overall resistance of the strain
decreased from 33.3% to 25% in the presence of the extract. These findings suggest that Bougainvillea
glabra could be used as an adjunct in the treatment of resistant infections, although further studies are
needed to identify the responsible metabolites and validate their efficacy in clinical models.
Keywords: Bougainvillea glabra, antimicrobial resistance, amikacin, gentamicin, Escherichia coli.
Artículo recibido 10 diciembre 2025
Aceptado para publicación: 10 enero 2026
Bougainvillea glabra increased the antimicrobial effect of gentamicin
against Escherichia coli “in vitro”
ABSTRACT
Antimicrobial resistance represents one of the main challenges to global health, as it limits the
effectiveness of antibiotics and threatens a post-antibiotic era. As alternatives, medicinal plant extracts
offer promising prospects for enhancing the action of conventional drugs. In this study, the effect of the
hydroalcoholic extract of Bougainvillea glabra was evaluated to determine the antimicrobial activity of
amikacin and gentamicin against Escherichia coli ATCC 25922 in vitro. The extract was made from the
plant's bracts by maceration in 70% ethanol and analyzed using the disk diffusion technique on Mueller-
Hinton agar. The results showed that the extract had its own antimicrobial activity and that, in
combination with aminoglycosides, it significantly increased the inhibition halos, particularly
gentamicin, which went from 9.04 mm to 17.98 mm, and amikacin, which went from 15.82 mm to 19.78
mm, evidence of an increase in the antimicrobial effect. In addition, the overall resistance of the strain
decreased from 33.3% to 25% in the presence of the extract. These findings suggest that Bougainvillea
glabra could be used as an adjunct in the treatment of resistant infections, although further studies are
needed to identify the responsible metabolites and validate their efficacy in clinical models.
Keywords: Bougainvillea glabra, antimicrobial resistance, amikacin, gentamicin, Escherichia coli.
Artículo recibido 10 diciembre 2025
Aceptado para publicación: 10 enero 2026
pág. 1220
INTRODUCCIÓN
La OMS advierte que en pleno siglo XXI se tenga pocas opciones para tratar infecciones bacterianas y
con ello de paso a una era “pos antibiótica”, cuyo objetivo nos dice que, aún contando con gran variedad
de antibióticos, ninguno será efectivo dentro de unos años más. Este fenómeno se debe, en gran medida,
al uso indiscriminado de antibióticos en medicina, ganadería y agricultura, lo que ha favorecido la
aparición y diseminación de bacterias multiresistentes (OMS, 2021., Vanegas-Múnera et al., 2020).
Anualmente un mínimo de 700 000 individuos muere debido a enfermedades farmacorresistentes, de
las cuales aproximadamente 230 000 fallecen a causa de la tuberculosis multirresistente. Se calcula que,
en el año 2050, las infecciones multirresistentes a antibióticos se convertirán en una de entre las primeras
causas de muerte, superando los 10 millones de fallecimientos anuales. La RAM se desarrolla a
consecuencia de mutaciones que manifiestan las bacterias en respuesta al empleo de esta clase de
medicamentos, esta resistencia puede ser acelerada por el uso inadecuado y desmedido de estos mismos
tomando en cuenta que no existe un buen plan de medidas y monitoreo de infecciones (OMS, 2020).
Con el paso del tiempo, la eficacia de los antibióticos se ha visto comprometida originado a la notable
capacidad adaptativa de los microorganismos a condiciones ambientales adversas, tales como,
variaciones extremas de temperatura, disponibilidad limitada o excesiva de oxígeno, escasez de
nutrientes en medios hostiles, además son capaces de transferir genéticamente esta información a otras
cepas, estimulando la extensión de la resistencia. Esta plasticidad adaptativa les confiere ventajas de
supervivencia y favorece la evolución de múltiples mecanismos de resistencia frente a los
antimicrobianos. Ante este panorama tanto la industria farmacéutica y otros sectores de la salud tienen
el propósito de mejorar y enfocar esfuerzos para optimizar los antibióticos disponibles con la finalidad
ampliar el espectro de acción y recuperar su eficacia clínica (Consejo General de Colegios de
Farmacéuticos, 2024).
A causa de la creciente problemática generada por la resistencia antimicrobiana, resulta indispensable
explorar alternativas terapéuticas que potencien el grado de éxito de antibióticos disponibles. En este
contexto, los derivados vegetales representan una fuente prometedora de compuestos bioactivos que
tienen la facultad de aumentar el efecto antibacteriano (AlSheikh et al., 2020). Es por ello que el objetivo
del presente trabajo es evaluar el efecto del extracto hidroalcohólico de Bougainvillea glabra, como
INTRODUCCIÓN
La OMS advierte que en pleno siglo XXI se tenga pocas opciones para tratar infecciones bacterianas y
con ello de paso a una era “pos antibiótica”, cuyo objetivo nos dice que, aún contando con gran variedad
de antibióticos, ninguno será efectivo dentro de unos años más. Este fenómeno se debe, en gran medida,
al uso indiscriminado de antibióticos en medicina, ganadería y agricultura, lo que ha favorecido la
aparición y diseminación de bacterias multiresistentes (OMS, 2021., Vanegas-Múnera et al., 2020).
Anualmente un mínimo de 700 000 individuos muere debido a enfermedades farmacorresistentes, de
las cuales aproximadamente 230 000 fallecen a causa de la tuberculosis multirresistente. Se calcula que,
en el año 2050, las infecciones multirresistentes a antibióticos se convertirán en una de entre las primeras
causas de muerte, superando los 10 millones de fallecimientos anuales. La RAM se desarrolla a
consecuencia de mutaciones que manifiestan las bacterias en respuesta al empleo de esta clase de
medicamentos, esta resistencia puede ser acelerada por el uso inadecuado y desmedido de estos mismos
tomando en cuenta que no existe un buen plan de medidas y monitoreo de infecciones (OMS, 2020).
Con el paso del tiempo, la eficacia de los antibióticos se ha visto comprometida originado a la notable
capacidad adaptativa de los microorganismos a condiciones ambientales adversas, tales como,
variaciones extremas de temperatura, disponibilidad limitada o excesiva de oxígeno, escasez de
nutrientes en medios hostiles, además son capaces de transferir genéticamente esta información a otras
cepas, estimulando la extensión de la resistencia. Esta plasticidad adaptativa les confiere ventajas de
supervivencia y favorece la evolución de múltiples mecanismos de resistencia frente a los
antimicrobianos. Ante este panorama tanto la industria farmacéutica y otros sectores de la salud tienen
el propósito de mejorar y enfocar esfuerzos para optimizar los antibióticos disponibles con la finalidad
ampliar el espectro de acción y recuperar su eficacia clínica (Consejo General de Colegios de
Farmacéuticos, 2024).
A causa de la creciente problemática generada por la resistencia antimicrobiana, resulta indispensable
explorar alternativas terapéuticas que potencien el grado de éxito de antibióticos disponibles. En este
contexto, los derivados vegetales representan una fuente prometedora de compuestos bioactivos que
tienen la facultad de aumentar el efecto antibacteriano (AlSheikh et al., 2020). Es por ello que el objetivo
del presente trabajo es evaluar el efecto del extracto hidroalcohólico de Bougainvillea glabra, como
pág. 1221
posible coadyuvante terapéutico en la actividad de amikacina y gentamicina frente a Escherichia coli
en condiciones in vitro.
Como antecedentes, la Boungainvillea glabra es una especie nativa de Sudamérica que pertenece a la
familia Nyctaginaceae, su nombre se le atribuye al navegador francés y comandante militar Louis
Antonie de Bouganville, quien fue el primer europeo en documentar la planta en Brasil en 1768 y fue
identificada en 1850 primeramente por el botánico suizo Jacques Denys Choisy. Esta se puede encontrar
en variedad de tonalidades desde rosa fucsia, café, roja, morada, blanca y bicolor. Se localiza
principalmente en zonas con climas cálidos, semicálidos y templados. Este tipo de planta por su
naturaleza se le atribuye características ornamentales, medicinales y comerciales, en México tiene usos
en medicina tradicional para aliviar distintas afecciones, las brácteas son utilizadas para preparar jarabes
e infusiones que son empleadas a decir popular para aliviar la tos, ronquidos y dolores de pulmón;
además de mitigar la “alferecía de niños” (cuya palabra se utiliza para hablar de una enfermedad
caracterizada por convulsiones y pérdida de conocimiento, muchas veces asociado a epilepsia)
ahogamiento, dolor de estómago, barros, mal de orín, tos ferina y para realizar limpias (Estrella y
González, 2020).
(Edwin. E et al., 2007) comentan que la hoja de B. glabra tiene efectos antiinflamatorios, en la región
de Mandsuar, India la emplean como tratamiento antidiarreico y para reducir la acidez de estómago,
igualmente detectaron que la actividad antidiarreica está asociada a la característica antimicrobiana que
la planta presenta.
Así pues para experimentar el efecto antibacteriano del extracto de B.glabra se implementó en el
desarrollo del estudio Escherichia coli, cuya bacteria tiene gran relevancia clínica ya que se manifiesta
tanto en infecciones de tipo comunitario como hospitalarias y que cada año notablemente va aumentando
su resistencia hacia los antibióticos, debido a diversos factores como, la recurrencia infecciones en los
pacientes, antibioticoterapia no completada, diagnósticos erróneos, desabasto de insumos farmacéuticos
en el sector sanitario, uso inadecuado o excesivo de estos medicamentos y automedicación, ocasionando
que el manejo clínico se complique y se desgasten todas las opciones terapéuticas conocidas(Peñaloza
y Aspiazu, 2021., Medline, 2024). En contexto la creciente amenaza a esta problemática exige la mejora
de estrategias innovadoras, los extractos vegetales representan una alternativa prometedora al contener
posible coadyuvante terapéutico en la actividad de amikacina y gentamicina frente a Escherichia coli
en condiciones in vitro.
Como antecedentes, la Boungainvillea glabra es una especie nativa de Sudamérica que pertenece a la
familia Nyctaginaceae, su nombre se le atribuye al navegador francés y comandante militar Louis
Antonie de Bouganville, quien fue el primer europeo en documentar la planta en Brasil en 1768 y fue
identificada en 1850 primeramente por el botánico suizo Jacques Denys Choisy. Esta se puede encontrar
en variedad de tonalidades desde rosa fucsia, café, roja, morada, blanca y bicolor. Se localiza
principalmente en zonas con climas cálidos, semicálidos y templados. Este tipo de planta por su
naturaleza se le atribuye características ornamentales, medicinales y comerciales, en México tiene usos
en medicina tradicional para aliviar distintas afecciones, las brácteas son utilizadas para preparar jarabes
e infusiones que son empleadas a decir popular para aliviar la tos, ronquidos y dolores de pulmón;
además de mitigar la “alferecía de niños” (cuya palabra se utiliza para hablar de una enfermedad
caracterizada por convulsiones y pérdida de conocimiento, muchas veces asociado a epilepsia)
ahogamiento, dolor de estómago, barros, mal de orín, tos ferina y para realizar limpias (Estrella y
González, 2020).
(Edwin. E et al., 2007) comentan que la hoja de B. glabra tiene efectos antiinflamatorios, en la región
de Mandsuar, India la emplean como tratamiento antidiarreico y para reducir la acidez de estómago,
igualmente detectaron que la actividad antidiarreica está asociada a la característica antimicrobiana que
la planta presenta.
Así pues para experimentar el efecto antibacteriano del extracto de B.glabra se implementó en el
desarrollo del estudio Escherichia coli, cuya bacteria tiene gran relevancia clínica ya que se manifiesta
tanto en infecciones de tipo comunitario como hospitalarias y que cada año notablemente va aumentando
su resistencia hacia los antibióticos, debido a diversos factores como, la recurrencia infecciones en los
pacientes, antibioticoterapia no completada, diagnósticos erróneos, desabasto de insumos farmacéuticos
en el sector sanitario, uso inadecuado o excesivo de estos medicamentos y automedicación, ocasionando
que el manejo clínico se complique y se desgasten todas las opciones terapéuticas conocidas(Peñaloza
y Aspiazu, 2021., Medline, 2024). En contexto la creciente amenaza a esta problemática exige la mejora
de estrategias innovadoras, los extractos vegetales representan una alternativa prometedora al contener
pág. 1222
sustancias con actividad antimicrobiana y capacidad moduladora de fármacos (Angelini, 2024). Por ello
en este trabajo de investigación tendrá como objetivo principal únicamente en analizar el efecto in vitro
que ejerce la planta B. glabra sobre la bacteria E. coli y sus posibles aplicaciones para optimizar la
antibioticoterapia.
METODOLOGÍA
Material vegetal
El día 26 de febrero de 2025 se colectaron las brácteas con flores de la planta Boungainvillea glabra
color púrpura en el Herbario Medicinal del Área Académica de Farmacia del ICSa UAEH, ubicado en
la comunidad de San Juan Tilcuautla perteneciente al municipio de San Agustín Tlaxiaca, Hidalgo,
México. La colecta se llevó a cabo de entre 09:10 de la mañana, se cuidó que las brácteas y flores
estuvieran libres de algún tipo de plaga o se encontraran marchitas o con otro color, se sometieron a un
lavado con agua corriente y se secaron con papel absorbente.
Preparación del extracto
Se pesaron 100 g de material vegetal y se cortaron trozos de entre 0.2 a 0.5 cm, se maceraron en un
extracto hidroalcohólico al 70 % (Alcohol etílico anhidro A.C.S de Química Meyer), se conservó a
temperatura ambiente habitual durante 96 horas y en seguimiento durante 8 horas a 70 °C, por último,
el extracto se evaporó.
Actividad antimicrobiana
Para el análisis de la función antibacteriana del extracto hidroalcohólico de B. glabra per se, en
combinación a diversos antibióticos se utilizó Escherichia coli ATCC 25922 y al mismo tiempo el
método de Kirby – Bauer con caldo nutritivo de Mueller – Hilton (Casa comercial, DIBICO®). Se
emplearon triplicados para las muestras control y las muestras con el extracto a experimentar.
Con el propósito de estudiar el objetivo se establecieron tres grupos experimentales:
1. Grupo control (-): Este grupo consistió únicamente en el cultivo de E. coli en agar Mueller
Hinton (Casa comercial, DIBICO®) y antibiograma negativo [Gutierrez Ramos Multibac para
bacterias (Gram -) Serie 2].
sustancias con actividad antimicrobiana y capacidad moduladora de fármacos (Angelini, 2024). Por ello
en este trabajo de investigación tendrá como objetivo principal únicamente en analizar el efecto in vitro
que ejerce la planta B. glabra sobre la bacteria E. coli y sus posibles aplicaciones para optimizar la
antibioticoterapia.
METODOLOGÍA
Material vegetal
El día 26 de febrero de 2025 se colectaron las brácteas con flores de la planta Boungainvillea glabra
color púrpura en el Herbario Medicinal del Área Académica de Farmacia del ICSa UAEH, ubicado en
la comunidad de San Juan Tilcuautla perteneciente al municipio de San Agustín Tlaxiaca, Hidalgo,
México. La colecta se llevó a cabo de entre 09:10 de la mañana, se cuidó que las brácteas y flores
estuvieran libres de algún tipo de plaga o se encontraran marchitas o con otro color, se sometieron a un
lavado con agua corriente y se secaron con papel absorbente.
Preparación del extracto
Se pesaron 100 g de material vegetal y se cortaron trozos de entre 0.2 a 0.5 cm, se maceraron en un
extracto hidroalcohólico al 70 % (Alcohol etílico anhidro A.C.S de Química Meyer), se conservó a
temperatura ambiente habitual durante 96 horas y en seguimiento durante 8 horas a 70 °C, por último,
el extracto se evaporó.
Actividad antimicrobiana
Para el análisis de la función antibacteriana del extracto hidroalcohólico de B. glabra per se, en
combinación a diversos antibióticos se utilizó Escherichia coli ATCC 25922 y al mismo tiempo el
método de Kirby – Bauer con caldo nutritivo de Mueller – Hilton (Casa comercial, DIBICO®). Se
emplearon triplicados para las muestras control y las muestras con el extracto a experimentar.
Con el propósito de estudiar el objetivo se establecieron tres grupos experimentales:
1. Grupo control (-): Este grupo consistió únicamente en el cultivo de E. coli en agar Mueller
Hinton (Casa comercial, DIBICO®) y antibiograma negativo [Gutierrez Ramos Multibac para
bacterias (Gram -) Serie 2].
pág. 1223
2. Grupo control (+): Este grupo consistió únicamente en el cultivo de la E.coli en agar Mueller
Hinton (Casa comercial, DIBICO®) y antibiograma positivo [Gutierrez Ramos Multibac para
bacterias (Gram +) Serie 2].
3. Grupo con extracto de B. glabra: En este grupo se usó la combinación del extracto con el agar
y se realizó el cultivo bacteriano en agar Mueller-Hinton (Casa comercial, DIBICO®) mezclado
con extracto de B. glabra.
4. Grupo con extracto de B. glabra y antibiograma negativo [Gutierrez Ramos Multibac para
bacterias (Gram -) Serie 2]: Este grupo incluyó la combinación del extracto con agar Mueller-
Hinton (Casa comercial, DIBICO®), se realizó cultivo bacteriano y antibiograma negativo.
Estos grupos permitieron identificar el efecto del extracto de B. glabra en la capacidad antibacteriana,
comparando los resultados del grupo control con antibiograma. En la situación de los grupos 3 y 4 se
hizo uso de una concentración de 1 g / L de extracto hidroalcohólico de B. glabra.
Para estandarizar la suspensión bacteriana se optó por aplicar el método de McFarland, se preparó la
solución en un matraz Erlenmeyer de 50 ml con una concentración de 1.5 x 10⁸ UFC/ml. La siembra se
efectúo con 1 ml de solución de E. coli sobre las cajas con agar Mueller – Hinton de los cuatro grupos
a estudiar, ya que secaran las cajas Petri con las siembras se colocaron los antibiogramas en todos los
grupos y se llevaron a la incubadora a 37 °C a 24 horas.
Análisis de los resultados
Para la interpretación de los registros microbiológicos se utilizó un vernier digital para medir los halos
de inhibición que arrojaron los antibiogramas con la finalidad de aplicar los parámetros de sensibilidad
que describe el proveedor [Gutierrez Ramos Multibac para bacterias (Gram -) Serie 2]:
o Sensible: Revela que la infección provocada por la cepa bacteriana muestra oportunidad
de tratarse con las dosis comunes del antibiótico.
o Intermedio: Se aproxima a concentraciones del antibiótico alcanzables usando dosis
elevadas de lo normal.
o Resistente: Refiere a aquellas bacterias en cuestión que no se inhiben a concentraciones
habituales alcanzadas en sangre o tejidos.
2. Grupo control (+): Este grupo consistió únicamente en el cultivo de la E.coli en agar Mueller
Hinton (Casa comercial, DIBICO®) y antibiograma positivo [Gutierrez Ramos Multibac para
bacterias (Gram +) Serie 2].
3. Grupo con extracto de B. glabra: En este grupo se usó la combinación del extracto con el agar
y se realizó el cultivo bacteriano en agar Mueller-Hinton (Casa comercial, DIBICO®) mezclado
con extracto de B. glabra.
4. Grupo con extracto de B. glabra y antibiograma negativo [Gutierrez Ramos Multibac para
bacterias (Gram -) Serie 2]: Este grupo incluyó la combinación del extracto con agar Mueller-
Hinton (Casa comercial, DIBICO®), se realizó cultivo bacteriano y antibiograma negativo.
Estos grupos permitieron identificar el efecto del extracto de B. glabra en la capacidad antibacteriana,
comparando los resultados del grupo control con antibiograma. En la situación de los grupos 3 y 4 se
hizo uso de una concentración de 1 g / L de extracto hidroalcohólico de B. glabra.
Para estandarizar la suspensión bacteriana se optó por aplicar el método de McFarland, se preparó la
solución en un matraz Erlenmeyer de 50 ml con una concentración de 1.5 x 10⁸ UFC/ml. La siembra se
efectúo con 1 ml de solución de E. coli sobre las cajas con agar Mueller – Hinton de los cuatro grupos
a estudiar, ya que secaran las cajas Petri con las siembras se colocaron los antibiogramas en todos los
grupos y se llevaron a la incubadora a 37 °C a 24 horas.
Análisis de los resultados
Para la interpretación de los registros microbiológicos se utilizó un vernier digital para medir los halos
de inhibición que arrojaron los antibiogramas con la finalidad de aplicar los parámetros de sensibilidad
que describe el proveedor [Gutierrez Ramos Multibac para bacterias (Gram -) Serie 2]:
o Sensible: Revela que la infección provocada por la cepa bacteriana muestra oportunidad
de tratarse con las dosis comunes del antibiótico.
o Intermedio: Se aproxima a concentraciones del antibiótico alcanzables usando dosis
elevadas de lo normal.
o Resistente: Refiere a aquellas bacterias en cuestión que no se inhiben a concentraciones
habituales alcanzadas en sangre o tejidos.
pág. 1224
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
La Organización Mundial de la Salud (OMS) ha clasificado 12 grupos de patógenos más relevantes, la
mayoría ellos son bacterias gramnegativas. Se divide en tres categorías según el nivel de urgencia para
favorecer el progreso de nuevos tratamientos antibióticos: prioridad crítica, alta y media. Entre estos,
Escherichia coli se posiciona en prioridad crítica (OMS, 2017).
Muchas bacterias gramnegativas son responsables de infecciones frecuentes, como neumonía e IVU, las
cuales presentan un incremento significativo en resistencia a antibióticos disponibles actualmente. Por
esta razón, la OMS insta a que los profesionales sanitarios dedicados al estudio de estas cepas resistentes
apliquen esfuerzos en la búsqueda de nuevas soluciones y enfoques innovadores para superar la
resistencia antimicrobiana (RAM), que representa un riesgo en aumento a nivel global (OMS, 2021).
Las opciones terapéuticas para infecciones ocasionadas por micoorganismos como Mycobacterium
tuberculosis y enterobacterias tales como Escherichia coli, Klebsiella y Acinetobacter son limitadas,
causan enfermedades infecciosas graves, frecuentemente mortales predominando mayormente en
entornos hospitalarios y residencias de adultos mayores (OMS, 2017).
Escherichia coli usualmente coloniza el intestino distal de humanos y animales. Algunas cepas son
comensales inocuos, mientras que otras son patógenas y pueden causar infecciones alimentarias,
infecciones urinarias, meningitis y, en casos severos, sepsis. Su alta plasticidad ecológica le permite
adaptarse rápidamente a diversos ambientes, ya sea como organismo independiente o como comensal
mutualista en el colon de mamíferos y aves (OMS, 2018., Ixtepan, 2018).
Para el tratamiento de infecciones por E. coli, los betalactámicos y las quinolonas son de las familias de
antibióticos más utilizadas. No obstante, con el transcurso del tiempo, las bacterias han desarrollado
mecanismos complejos de resistencia que brindan características para sobrevivir como consecuencia
provocada a la acción de agentes antimicrobianos (OMS, 2018., Aguilar, 2017).
En un estudio desarrollado en el Hospital Regional ISSSTE de Puebla, México, se incluyeron 36 cepas
en donde se detectaron 30 como E. coli aisladas de pacientes hospitalizados con diversas patologías, se
midió la sensibilidad con 18 antibióticos de distintas familias por el método de Kirby-Bauer. En el
antibiograma se detectó el 86.6% de (26/30) de las cepas, la cantidad de cepas resistentes a β-lactámicos
fue por encima del 80% para 6 antibióticos: ampicilina (AMP), cefotaxima (CTX), organismos
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
La Organización Mundial de la Salud (OMS) ha clasificado 12 grupos de patógenos más relevantes, la
mayoría ellos son bacterias gramnegativas. Se divide en tres categorías según el nivel de urgencia para
favorecer el progreso de nuevos tratamientos antibióticos: prioridad crítica, alta y media. Entre estos,
Escherichia coli se posiciona en prioridad crítica (OMS, 2017).
Muchas bacterias gramnegativas son responsables de infecciones frecuentes, como neumonía e IVU, las
cuales presentan un incremento significativo en resistencia a antibióticos disponibles actualmente. Por
esta razón, la OMS insta a que los profesionales sanitarios dedicados al estudio de estas cepas resistentes
apliquen esfuerzos en la búsqueda de nuevas soluciones y enfoques innovadores para superar la
resistencia antimicrobiana (RAM), que representa un riesgo en aumento a nivel global (OMS, 2021).
Las opciones terapéuticas para infecciones ocasionadas por micoorganismos como Mycobacterium
tuberculosis y enterobacterias tales como Escherichia coli, Klebsiella y Acinetobacter son limitadas,
causan enfermedades infecciosas graves, frecuentemente mortales predominando mayormente en
entornos hospitalarios y residencias de adultos mayores (OMS, 2017).
Escherichia coli usualmente coloniza el intestino distal de humanos y animales. Algunas cepas son
comensales inocuos, mientras que otras son patógenas y pueden causar infecciones alimentarias,
infecciones urinarias, meningitis y, en casos severos, sepsis. Su alta plasticidad ecológica le permite
adaptarse rápidamente a diversos ambientes, ya sea como organismo independiente o como comensal
mutualista en el colon de mamíferos y aves (OMS, 2018., Ixtepan, 2018).
Para el tratamiento de infecciones por E. coli, los betalactámicos y las quinolonas son de las familias de
antibióticos más utilizadas. No obstante, con el transcurso del tiempo, las bacterias han desarrollado
mecanismos complejos de resistencia que brindan características para sobrevivir como consecuencia
provocada a la acción de agentes antimicrobianos (OMS, 2018., Aguilar, 2017).
En un estudio desarrollado en el Hospital Regional ISSSTE de Puebla, México, se incluyeron 36 cepas
en donde se detectaron 30 como E. coli aisladas de pacientes hospitalizados con diversas patologías, se
midió la sensibilidad con 18 antibióticos de distintas familias por el método de Kirby-Bauer. En el
antibiograma se detectó el 86.6% de (26/30) de las cepas, la cantidad de cepas resistentes a β-lactámicos
fue por encima del 80% para 6 antibióticos: ampicilina (AMP), cefotaxima (CTX), organismos
pág. 1225
resistentes a carbapenémicos (CRO), aztreonam (ATM), ceftazidima (CAZ) y cefepima (FEP),
asimismo para las quinolonas ácido nalidíxico (NA) y ciprofloxacino (CIP). El estudio analizó e
identificó cepas de E. coli productores de BLEE y resistentes a quinolonas tanto en pacientes
hospitalizados y de la comunidad (Aguilar, 2017).
A pesar del empleo frecuente de betalactámicos y quinolonas para el manejo de infecciones ocasionadas
por E.coli, también el manejo de aminoglucósidos es muy conocido, pero lamentablemente algunas
veces existe resistencia. Los aminoglucósidos cuentan con una cualidad de espectro amplio y
frecuentemente son más eficaces en bacterias G (-). En el Laboratorio de Infecciones Hospitalarias y de
la Comunidad de Puebla, México, se analizaron 66 cepas provenientes de donaciones de biopsias de 3
pacientes con EII, dos de ellos con un tratamiento previo a quinolonas, para gentamicina (GE),
amikacina (AK) y ácido nalidíxico (NA) 66 cepas se analizaron, en cambio para tobramicina,
estreptomicina y ciprofloxacino (CIP) a 29 cepas se les realizó antibiograma. Los resultados examinados
arrojaron un perfil de resistencia elevado para gentamicina (GE) 81.80% (54/66 cepas), tobramicina
79.30% (23/29), estreptomicina 89.60% (26/29), ácido nalidixico (NA) 83.00% (55/66), y
ciprofloxacino 79.30% (23/29), mientras tanto en amikacina se detectó un parámetro sensible de 85.00%
(56/66). Se concluyó que los aminoglucósidos y quinolonas, habitualmente no son efectivos en pacientes
con EII ya que presentan alta resistencia (Alcalá, 2023).
Dado el contexto de resistencia bacteriana en aminoglucósidos y a la relevancia clínica de Escherichia
coli, se exponen a continuación los resultados experimentales de la presente investigación que
evidencian un efecto potencialmente beneficioso del extracto evaluado.
En el avance se registró un crecimiento positivo de E. coli en los cultivos control (C) que solo contenían
agar, en los cultivos en combinación con el extracto de B. Glabra (B) se detectó que el desarrollo
bacteriano de E. coli fue inhibido.
resistentes a carbapenémicos (CRO), aztreonam (ATM), ceftazidima (CAZ) y cefepima (FEP),
asimismo para las quinolonas ácido nalidíxico (NA) y ciprofloxacino (CIP). El estudio analizó e
identificó cepas de E. coli productores de BLEE y resistentes a quinolonas tanto en pacientes
hospitalizados y de la comunidad (Aguilar, 2017).
A pesar del empleo frecuente de betalactámicos y quinolonas para el manejo de infecciones ocasionadas
por E.coli, también el manejo de aminoglucósidos es muy conocido, pero lamentablemente algunas
veces existe resistencia. Los aminoglucósidos cuentan con una cualidad de espectro amplio y
frecuentemente son más eficaces en bacterias G (-). En el Laboratorio de Infecciones Hospitalarias y de
la Comunidad de Puebla, México, se analizaron 66 cepas provenientes de donaciones de biopsias de 3
pacientes con EII, dos de ellos con un tratamiento previo a quinolonas, para gentamicina (GE),
amikacina (AK) y ácido nalidíxico (NA) 66 cepas se analizaron, en cambio para tobramicina,
estreptomicina y ciprofloxacino (CIP) a 29 cepas se les realizó antibiograma. Los resultados examinados
arrojaron un perfil de resistencia elevado para gentamicina (GE) 81.80% (54/66 cepas), tobramicina
79.30% (23/29), estreptomicina 89.60% (26/29), ácido nalidixico (NA) 83.00% (55/66), y
ciprofloxacino 79.30% (23/29), mientras tanto en amikacina se detectó un parámetro sensible de 85.00%
(56/66). Se concluyó que los aminoglucósidos y quinolonas, habitualmente no son efectivos en pacientes
con EII ya que presentan alta resistencia (Alcalá, 2023).
Dado el contexto de resistencia bacteriana en aminoglucósidos y a la relevancia clínica de Escherichia
coli, se exponen a continuación los resultados experimentales de la presente investigación que
evidencian un efecto potencialmente beneficioso del extracto evaluado.
En el avance se registró un crecimiento positivo de E. coli en los cultivos control (C) que solo contenían
agar, en los cultivos en combinación con el extracto de B. Glabra (B) se detectó que el desarrollo
bacteriano de E. coli fue inhibido.
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Figura 1. De lado izquierdo (C) se muestra el cultivo de E. coli en agar Mueller – Hinton donde se
observó opaca la caja Petri indicando crecimiento bacteriano y de lado derecho (B) se muestra el
cultivo de agar Mueller – Hinton en combinación con el extracto de B. glabra que demostró la
detención del crecimiento bacteriano.
Asimismo E. coli ATCC 25922 mostró resistencia de 33.33% a los distintos antibióticos del
antibiograma (rojo) para bacterias G (-) [Gutierrez Ramos Multibac para bacterias (Gram -) Serie 2].
Tabla 1. Resistencia de Escherichia coli ATCC 25922 a cuatro antibióticos incluidos en el antibiograma
Antibiótico Resistente Intermedio Sensible
Amikacina (AK) +
Ampicilina (AM) +
Carbecilina (CB) +
Cefalotina (CF) +
Cefotaxima (CF) +
Ciprofloxacino (CPF) +
Cloranfenicol (CL) +
Gentamicina (GE) +
Netilmicina (NET) +
Nitrofurantoina (NF) +
Sulfametoxazol/trimetroprim (SXTE) +
Norfloxacino (NOF) +
Figura 1. De lado izquierdo (C) se muestra el cultivo de E. coli en agar Mueller – Hinton donde se
observó opaca la caja Petri indicando crecimiento bacteriano y de lado derecho (B) se muestra el
cultivo de agar Mueller – Hinton en combinación con el extracto de B. glabra que demostró la
detención del crecimiento bacteriano.
Asimismo E. coli ATCC 25922 mostró resistencia de 33.33% a los distintos antibióticos del
antibiograma (rojo) para bacterias G (-) [Gutierrez Ramos Multibac para bacterias (Gram -) Serie 2].
Tabla 1. Resistencia de Escherichia coli ATCC 25922 a cuatro antibióticos incluidos en el antibiograma
Antibiótico Resistente Intermedio Sensible
Amikacina (AK) +
Ampicilina (AM) +
Carbecilina (CB) +
Cefalotina (CF) +
Cefotaxima (CF) +
Ciprofloxacino (CPF) +
Cloranfenicol (CL) +
Gentamicina (GE) +
Netilmicina (NET) +
Nitrofurantoina (NF) +
Sulfametoxazol/trimetroprim (SXTE) +
Norfloxacino (NOF) +
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De las manifestaciones más relevantes fue en relación con gentamicina (GE), aunque al inicio se mostró
resistente, su combinación con el extracto hidroalcohólico de B. glabra tuvo un efecto sensible a E. coli
e igualmente con amikacina (AK), reveló que de tener un efecto intermedio la cepa pasó a ser sensible,
los halos de inhibición de ambos antibióticos aumentaron su diámetro como se muestra a continuación.
Tabla 2. Resistencia de E. coli a diversos antibióticos junto con el extracto hidroalcohólico de B. glabra,
los halos de inhibición de amikacina (AK) y gentamicina (GE) mejoraron.
Antibiótico C(+) Halo (mm) Con B. glabra Halo (mm)
Amikacina (AK) 15.82 19.78
Ampicilina (AM) 0 8.23
Carbecilina (CB) 14.38 15.46
Cefalotina (CF) 11.46 13.63
Cefotaxima (CF) 25.42 25.75
Ciprofloxacino (CPF) 28.19 27.28
Cloranfenicol (CL) 20.58 21.56
Gentamicina (GE) 9.04 17.98
Netilmicina (NET) 17.72 20.66
Nitrofurantoina (NF) 19.8 20.76
Sulfametoxazol/trimetroprim (SXTE) 20.27 22.22
Norfloxacino (NOF) 20.92 23.64
De las manifestaciones más relevantes fue en relación con gentamicina (GE), aunque al inicio se mostró
resistente, su combinación con el extracto hidroalcohólico de B. glabra tuvo un efecto sensible a E. coli
e igualmente con amikacina (AK), reveló que de tener un efecto intermedio la cepa pasó a ser sensible,
los halos de inhibición de ambos antibióticos aumentaron su diámetro como se muestra a continuación.
Tabla 2. Resistencia de E. coli a diversos antibióticos junto con el extracto hidroalcohólico de B. glabra,
los halos de inhibición de amikacina (AK) y gentamicina (GE) mejoraron.
Antibiótico C(+) Halo (mm) Con B. glabra Halo (mm)
Amikacina (AK) 15.82 19.78
Ampicilina (AM) 0 8.23
Carbecilina (CB) 14.38 15.46
Cefalotina (CF) 11.46 13.63
Cefotaxima (CF) 25.42 25.75
Ciprofloxacino (CPF) 28.19 27.28
Cloranfenicol (CL) 20.58 21.56
Gentamicina (GE) 9.04 17.98
Netilmicina (NET) 17.72 20.66
Nitrofurantoina (NF) 19.8 20.76
Sulfametoxazol/trimetroprim (SXTE) 20.27 22.22
Norfloxacino (NOF) 20.92 23.64
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Figura 2. La incorporación del extracto de B. glabra en el medio Mueller-Hinton resultó en un
incremento de los halos de inhibición generados por amikacina (AK) y gentamicina (GE) en pruebas de
susceptibilidad frente a E. coli.
Como antecedentes, en estudios previos se ha reportado la evaluación del efecto antimicrobiano de B.
glabra utilizando tres tipos de extractos obtenidos de sus hojas: acuoso, acetónico y etanólico, los
extractos fueron testeados ante Escherichia coli (NCIM 2931), Bacillus subtilis (NCIM 2063),
Klebsiella pneumoniae (NCIM 2957), Staphylococcus aureus (NCIM 2079) y Proteus vulgaris (NCIM
2027). Los resultados demostraron que el extracto acetónico de hojas de B. glabra presentó la mayor
eficacia antimicrobiana, atribuida a la existencia de compuestos como, alcaloides, flavonoides, taninos,
saponinas, pinitol y betacianinas, considerados como los agentes responsables de dicha actividad (Edwin
et al., 2007., Saleem, 2020). Por otro lado, se ha documentado que los compuestos de los extractos
etanólicos y acuosos de las brácteas de la G. glabra tienen propiedades antibacterianas (Osuna et al.,
2005, como se citó en Ornelas et al., 2025).
Hablando de las aplicaciones médicas de esta especie vegetal es la implementación de nanopartículas
de plata sintetizadas mediante B. spectabilis que forma parte de la familia de B. Glabra, en esta
investigación describe que el extracto acuoso de B. spectabilis presenta cualidades antimicrobianas que
se potencian cuando están presentes en tamaño nanométrico, además de ser biocompatibles. Las
bacterias implicadas para corroborar la efectividad antibacteriana fueron Escherichia coli, Pseudomonas
aeruginosa y Staphylococcus aureus aislados procedentes de úlceras de pie diabético, igual cepas de
Klebsiella pneumoniae ATCC 700603 y Staphylococcus aureus 25923, resaltando su efectividad
particularmente hacia bacterias gramnegativas como E. coli (Ramírez-Herrera, 2024).
Figura 2. La incorporación del extracto de B. glabra en el medio Mueller-Hinton resultó en un
incremento de los halos de inhibición generados por amikacina (AK) y gentamicina (GE) en pruebas de
susceptibilidad frente a E. coli.
Como antecedentes, en estudios previos se ha reportado la evaluación del efecto antimicrobiano de B.
glabra utilizando tres tipos de extractos obtenidos de sus hojas: acuoso, acetónico y etanólico, los
extractos fueron testeados ante Escherichia coli (NCIM 2931), Bacillus subtilis (NCIM 2063),
Klebsiella pneumoniae (NCIM 2957), Staphylococcus aureus (NCIM 2079) y Proteus vulgaris (NCIM
2027). Los resultados demostraron que el extracto acetónico de hojas de B. glabra presentó la mayor
eficacia antimicrobiana, atribuida a la existencia de compuestos como, alcaloides, flavonoides, taninos,
saponinas, pinitol y betacianinas, considerados como los agentes responsables de dicha actividad (Edwin
et al., 2007., Saleem, 2020). Por otro lado, se ha documentado que los compuestos de los extractos
etanólicos y acuosos de las brácteas de la G. glabra tienen propiedades antibacterianas (Osuna et al.,
2005, como se citó en Ornelas et al., 2025).
Hablando de las aplicaciones médicas de esta especie vegetal es la implementación de nanopartículas
de plata sintetizadas mediante B. spectabilis que forma parte de la familia de B. Glabra, en esta
investigación describe que el extracto acuoso de B. spectabilis presenta cualidades antimicrobianas que
se potencian cuando están presentes en tamaño nanométrico, además de ser biocompatibles. Las
bacterias implicadas para corroborar la efectividad antibacteriana fueron Escherichia coli, Pseudomonas
aeruginosa y Staphylococcus aureus aislados procedentes de úlceras de pie diabético, igual cepas de
Klebsiella pneumoniae ATCC 700603 y Staphylococcus aureus 25923, resaltando su efectividad
particularmente hacia bacterias gramnegativas como E. coli (Ramírez-Herrera, 2024).
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Desde sus perspectivas, Ornelas et al. (2025) determinaron la capacidad antibacteriana de extractos con
brácteas de B. glabra obtenidos por diferentes técnicas de extracción (Soxhlet, sonificación y
maceración) y solventes (agua, metanol, etanol y acetona), utilizando el método de difusión en pozo.
Los autores concluyeron que el extracto metanólico obtenido por Soxhlet presentó la mayor actividad
antibacteriana, evidenciada por un incremento en los diámetros de inhibición. En el análisis,
Pseudomonas aeruginosa fue la cepa más sensible (15.6 mm), seguida por Staphylococcus epidermidis
(10.6 mm), Staphylococcus aureus (9.6 mm), Acinetobacter baumannii (8.3 mm) y Escherichia coli (4.1
mm). Dichos resultados indican que las especies bacterianas gramnegativas fueron menos susceptibles
al extracto, posiblemente a la complejidad estructural de su envoltura celular. Además, el espacio
periplásmico de estas bacterias puede contener enzimas capaces de degradar sustancias externas,
facilitando mayor resistencia.
En igual sentido, Mayo et al. (2020) reportaron que el extracto etanólico de las flores de Bougainvillea
no presentó actividad inhibitoria hacia a Staphylococcus aureus, aunque sí frente a Streptococcus
pyogenes. Los autores sugirieron que podrían requerirse concentraciones más altas del extracto para
confirmar la aparente inactividad frente a S. aureus.
Al revisar la información, la acción antibacteriana de B. glabra presenta variaciones, particularmente
contra E. coli, en un estudio, se reportó que el extracto etanólico obtenido de las brácteas de B. glabra
no mostró inhibición contra esta bacteria, lo que se asoció a factores como, el origen del material
biológico, los métodos de extracción empleados y la pureza de los extractos. Las variaciones observadas
entre estudios pueden explicarse por múltiples determinantes que impactan en el perfil fitoquímico de
los tipos de plantas medicinales tales como, la edad, las condiciones ambientales (clima, temperatura,
luz, altitud y humedad) y los factores biológicos como hibridación, mutaciones, variaciones genéticas y
diferencias fisiológicas aspectos que podrían explicar las diferencias de los hallazgos obtenidos por
distintos autores (Miranda y Cuéllar, 2001; Compean-Vargas et al., 2024).
Para explicar el modo de acción de B. glabra frente a E. coli, es relevante destacar los fitoquímicos que
componen a dicha planta. Se manejó las brácteas de B. glabra en este trabajo, en ellas están presentes
metabolitos secundarios tal como, ácidos grasos, alcoholes grasos, aldehídos, cetonas, terpenos, ácidos
Desde sus perspectivas, Ornelas et al. (2025) determinaron la capacidad antibacteriana de extractos con
brácteas de B. glabra obtenidos por diferentes técnicas de extracción (Soxhlet, sonificación y
maceración) y solventes (agua, metanol, etanol y acetona), utilizando el método de difusión en pozo.
Los autores concluyeron que el extracto metanólico obtenido por Soxhlet presentó la mayor actividad
antibacteriana, evidenciada por un incremento en los diámetros de inhibición. En el análisis,
Pseudomonas aeruginosa fue la cepa más sensible (15.6 mm), seguida por Staphylococcus epidermidis
(10.6 mm), Staphylococcus aureus (9.6 mm), Acinetobacter baumannii (8.3 mm) y Escherichia coli (4.1
mm). Dichos resultados indican que las especies bacterianas gramnegativas fueron menos susceptibles
al extracto, posiblemente a la complejidad estructural de su envoltura celular. Además, el espacio
periplásmico de estas bacterias puede contener enzimas capaces de degradar sustancias externas,
facilitando mayor resistencia.
En igual sentido, Mayo et al. (2020) reportaron que el extracto etanólico de las flores de Bougainvillea
no presentó actividad inhibitoria hacia a Staphylococcus aureus, aunque sí frente a Streptococcus
pyogenes. Los autores sugirieron que podrían requerirse concentraciones más altas del extracto para
confirmar la aparente inactividad frente a S. aureus.
Al revisar la información, la acción antibacteriana de B. glabra presenta variaciones, particularmente
contra E. coli, en un estudio, se reportó que el extracto etanólico obtenido de las brácteas de B. glabra
no mostró inhibición contra esta bacteria, lo que se asoció a factores como, el origen del material
biológico, los métodos de extracción empleados y la pureza de los extractos. Las variaciones observadas
entre estudios pueden explicarse por múltiples determinantes que impactan en el perfil fitoquímico de
los tipos de plantas medicinales tales como, la edad, las condiciones ambientales (clima, temperatura,
luz, altitud y humedad) y los factores biológicos como hibridación, mutaciones, variaciones genéticas y
diferencias fisiológicas aspectos que podrían explicar las diferencias de los hallazgos obtenidos por
distintos autores (Miranda y Cuéllar, 2001; Compean-Vargas et al., 2024).
Para explicar el modo de acción de B. glabra frente a E. coli, es relevante destacar los fitoquímicos que
componen a dicha planta. Se manejó las brácteas de B. glabra en este trabajo, en ellas están presentes
metabolitos secundarios tal como, ácidos grasos, alcoholes grasos, aldehídos, cetonas, terpenos, ácidos
pág. 1230
fenólicos y flavonoides (Vukovic et al., 2013, Abarca-Vargas et al., 2016, 2019; Saleem et al., 2020;,
como se citó en Compean-Vargas et al., 2024).
La literatura y en las distintas fuentes de información nos dicen que el alcohol etílico pudo aislar de las
brácteas de B. glabra metabolitos secundarios como, terpenos (saponinas), flavonoides (quercetina),
taninos (ácido gálico) y betalaínas (betacinaina) las que probablemente son responsables del efecto
antimicrobiano. (Pandey y Tripathi, 2013; Abubakar y Haque, 2020; Lee et al., 2024 como se citó en
Ornelas et al., 2025).
Hablando de las vías a través de las cuales actúan los metabolitos implicados se tienen diversas hipótesis,
(Cowan 1999, como se citó en Mayo et al., 2020) menciona que “la actividad de los flavonoides ante la
acción hacia los microorganismos probablemente se debe a la unión y formación de complejos con
proteínas en forma soluble, extracelulares y con las células de la pared bacteriana. De forma similar, los
taninos poseen una interacción sobre adhesinas (proteínas de la pared celular) y a la unión a polisacáridos
de las bacterias”.
Los betalaínas y flavonoides han sido asociados con mecanismos antibacterianos que comprenden, la
desestabilización de la bicapa lipídica de la membrana celular, cambios en la conformación de los ácidos
grasos, baja captación de nutrientes (glucosa), elevación de la permeabilidad membranal que provoca
fugas iónicas (potasio y protones), interferencia con funciones enzimáticas vitales causando lisis celular
o impedir la replicación. La quercetina tiene la propiedad de unirse a enzimas bacterianas que son clave,
tal como sucede en el ADN girasa de E. coli, intentando evitar la replicación del ADN bacteriano y
limitando su proliferación. Los taninos poseen el poder de anular proteínas y enzimas secretadas por los
microorganismos, evitando procesos de infección (Lee et al., 2024, Yazdanian et al., 2022, Ringuelet,
2013 como se citó en Ornelas et al., 2025).
Según Rey et al. (2013, como se citó en Ponce, 2022), el posible mecanismo de acción de las saponinas
consiste en la alteración de la permeabilidad de la membrana creando poros que permite liberar proteínas
intracelulares. Asimismo, se observaron variaciones en las estructuras bioquímicas y los constituyentes
celulares, incluyendo proteínas, polisacáridos, ácidos grasos y ácidos nucleicos, tanto en bacterias
grampositivas como gramnegativas, provocando daños estructurales y funcionales en las células.
fenólicos y flavonoides (Vukovic et al., 2013, Abarca-Vargas et al., 2016, 2019; Saleem et al., 2020;,
como se citó en Compean-Vargas et al., 2024).
La literatura y en las distintas fuentes de información nos dicen que el alcohol etílico pudo aislar de las
brácteas de B. glabra metabolitos secundarios como, terpenos (saponinas), flavonoides (quercetina),
taninos (ácido gálico) y betalaínas (betacinaina) las que probablemente son responsables del efecto
antimicrobiano. (Pandey y Tripathi, 2013; Abubakar y Haque, 2020; Lee et al., 2024 como se citó en
Ornelas et al., 2025).
Hablando de las vías a través de las cuales actúan los metabolitos implicados se tienen diversas hipótesis,
(Cowan 1999, como se citó en Mayo et al., 2020) menciona que “la actividad de los flavonoides ante la
acción hacia los microorganismos probablemente se debe a la unión y formación de complejos con
proteínas en forma soluble, extracelulares y con las células de la pared bacteriana. De forma similar, los
taninos poseen una interacción sobre adhesinas (proteínas de la pared celular) y a la unión a polisacáridos
de las bacterias”.
Los betalaínas y flavonoides han sido asociados con mecanismos antibacterianos que comprenden, la
desestabilización de la bicapa lipídica de la membrana celular, cambios en la conformación de los ácidos
grasos, baja captación de nutrientes (glucosa), elevación de la permeabilidad membranal que provoca
fugas iónicas (potasio y protones), interferencia con funciones enzimáticas vitales causando lisis celular
o impedir la replicación. La quercetina tiene la propiedad de unirse a enzimas bacterianas que son clave,
tal como sucede en el ADN girasa de E. coli, intentando evitar la replicación del ADN bacteriano y
limitando su proliferación. Los taninos poseen el poder de anular proteínas y enzimas secretadas por los
microorganismos, evitando procesos de infección (Lee et al., 2024, Yazdanian et al., 2022, Ringuelet,
2013 como se citó en Ornelas et al., 2025).
Según Rey et al. (2013, como se citó en Ponce, 2022), el posible mecanismo de acción de las saponinas
consiste en la alteración de la permeabilidad de la membrana creando poros que permite liberar proteínas
intracelulares. Asimismo, se observaron variaciones en las estructuras bioquímicas y los constituyentes
celulares, incluyendo proteínas, polisacáridos, ácidos grasos y ácidos nucleicos, tanto en bacterias
grampositivas como gramnegativas, provocando daños estructurales y funcionales en las células.
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Los efectos del empleo del extracto hidroalcohólico de B.glabra en pruebas “in vitro” con E. coli,
muestran que, en ciertos antibióticos, se logró un incremento antibacteriano. Se registró un
mejoramiento en algunos de los antibióticos experimentados, disminuyendo la resistencia en aquellos
que sin la presencia del extracto no presentaron actividad frente a E. coli principalmente en gentamicina
(GE) y amikacina (AK).
Los resultados del actual proyecto de investigación pueden ser parte de soluciones innovadoras para
contrarrestar la resistencia microbiana a antibióticos que ya desde hace años pero que últimamente se
ha hecho cada vez más frecuente con un impacto y relevancia clínica (WHO, 2023).
El empleo de B. glabra tiene un buen pronóstico para formar parte de propuestas innovadoras a
soluciones contra la RAM, tomando como referencia la información revisada, existe un área de
oportunidad para el empleo de las brácteas y flores de Bougainvillea glabra como agente potencial para
combatir Escherichia coli y quizá a otras cepas multirresistentes que comprometen la salud mundial.
CONCLUSIONES
Se evidenció que Escherichia coli ATCC 25922 presentó resistencia a 4 de los 12 antibióticos evaluados.
Al combinar estos fármacos con el extracto hidroalcohólico de Bougainvillea glabra, dos
aminoglucósidos mostraron un incremento del efecto, reduciéndose la resistencia inicialmente
registrada. En particular, la gentamicina (GE) que inicialmente se clasificó como resistente, pasó a
sensible tras la combinación; de modo similar, la amikacina que manifestó un efecto intermedio logró
modificarse a sensible.
Estos resultados demuestran que el empleo del extracto hidroalcohólico de Bougainvillea glabra puede
incrementar la eficacia antibacteriana de los aminoglucósidos frente a E. coli resistente. La
implementación de extractos vegetales representa una estrategia potencial para optimizar o innovar
antibióticos y dar paso a tratamientos de bacterias patógenas con relevancia clínica; no obstante, aún
existen limitaciones para su implementación que requieren investigación adicional antes de su
aplicación translacional.
Los efectos del empleo del extracto hidroalcohólico de B.glabra en pruebas “in vitro” con E. coli,
muestran que, en ciertos antibióticos, se logró un incremento antibacteriano. Se registró un
mejoramiento en algunos de los antibióticos experimentados, disminuyendo la resistencia en aquellos
que sin la presencia del extracto no presentaron actividad frente a E. coli principalmente en gentamicina
(GE) y amikacina (AK).
Los resultados del actual proyecto de investigación pueden ser parte de soluciones innovadoras para
contrarrestar la resistencia microbiana a antibióticos que ya desde hace años pero que últimamente se
ha hecho cada vez más frecuente con un impacto y relevancia clínica (WHO, 2023).
El empleo de B. glabra tiene un buen pronóstico para formar parte de propuestas innovadoras a
soluciones contra la RAM, tomando como referencia la información revisada, existe un área de
oportunidad para el empleo de las brácteas y flores de Bougainvillea glabra como agente potencial para
combatir Escherichia coli y quizá a otras cepas multirresistentes que comprometen la salud mundial.
CONCLUSIONES
Se evidenció que Escherichia coli ATCC 25922 presentó resistencia a 4 de los 12 antibióticos evaluados.
Al combinar estos fármacos con el extracto hidroalcohólico de Bougainvillea glabra, dos
aminoglucósidos mostraron un incremento del efecto, reduciéndose la resistencia inicialmente
registrada. En particular, la gentamicina (GE) que inicialmente se clasificó como resistente, pasó a
sensible tras la combinación; de modo similar, la amikacina que manifestó un efecto intermedio logró
modificarse a sensible.
Estos resultados demuestran que el empleo del extracto hidroalcohólico de Bougainvillea glabra puede
incrementar la eficacia antibacteriana de los aminoglucósidos frente a E. coli resistente. La
implementación de extractos vegetales representa una estrategia potencial para optimizar o innovar
antibióticos y dar paso a tratamientos de bacterias patógenas con relevancia clínica; no obstante, aún
existen limitaciones para su implementación que requieren investigación adicional antes de su
aplicación translacional.
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REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Organización Mundial de la Salud. (17 de noviembre de 2021). Resistencia a los antimicrobianos.
https://www.who.int/es/news-room/fact-sheets/detail/antimicrobial-resistance
Vanegas-Múnera, J. M., Jiménez-Quiceno, J. N. (2020). Resistencia antimicrobiana en el siglo XXI:
¿hacia una era postantibiótica? Revista Facultad Nacional de Salud Pública, 38(1), 1–6.
https://doi.org/10.17533/udea.rfnsp.v38n1e337759
Organización Mundial de la Salud. (31 de julio de 2020). Resistencia a los antibióticos.
https://www.who.int/es/news-room/fact-sheets/detail/antibiotic-resistance
Consejo General de Colegios Oficiales de Farmacéuticos. (2024). Panorama de las resistencias
microbianas y nuevos antibióticos (Punto Farmacológico, n. 185).
https://www.farmaceuticos.com/wp-content/uploads/2024/11/PF-185-Panorama-de-las-
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